
基因编辑技术作为现代生命科学领域的核心技术之一,正以前所未有的速度推动着生物医学、农业、生物制药等多个领域的变革与发展,其中 CRISPR-Cas9 技术的出现更是使基因编辑的精准性、效率和应用范围得到了极大提升,宛如一把 “神奇的手术刀”,为攻克遗传性疾病、培育优良农作物品种、开发创新药物等提供了革命性的解决方案。
一、基因编辑技术行业概述
1、定义
根据北京研精毕智信息咨询发布的调研报告指出,基因编辑又被称作基因组编辑,是一项能够对生物体基因组特定目标基因进行精确修饰的技术。其核心原理是借助核酸内切酶,精准识别并切断目标 DNA 序列,造成 DNA 双链断裂(DSBs)。当 DNA 双链断裂发生后,生物体自身会启动两种主要的修复机制:非同源末端连接(NHEJ)和同源重组(HR) 。
非同源末端连接修复途径在没有修复模板基因的情况下被触发,此过程中,断裂的 DNA 末端会直接连接,然而这种连接方式往往不够精确,大概率会产生插入或缺失突变,导致整个基因发生移码突变,进而使基因失去原有的功能,基于此原理的基因编辑技术通常被用于基因敲除,即通过破坏特定基因的功能,研究其在生物体内的作用,或者用于治疗某些由基因功能异常导致的疾病。
同源重组修复途径则需要有与目的 DNA 两侧同源的供体 DNA 模板(双链质粒或是单链 DNA)存在时才会启用。在这一过程中,生物体按照供体 DNA 模板来修复目的基因序列,能够将研究者预先设计的供体基因精确插入到目标位点,实现对基因的定向改造,这种基因编辑技术被称为基因敲入。基因敲入技术在基因治疗中具有重要应用,例如可以将正常的基因片段敲入到患者体内的特定基因位点,以替代有缺陷的基因,从而治疗某些遗传性疾病;在生物制药领域,也可通过基因敲入技术改造微生物,使其能够高效生产特定的蛋白质药物。通过对这两种修复机制的巧妙利用,基因编辑技术能够实现对 DNA 序列的删除、插入、替换等多种遗传改造操作,为生命科学研究和生物医学应用开辟了广阔的前景。无论是在探索基因功能、研发新型药物,还是在治疗疑难病症等方面,基因编辑技术都展现出了巨大的潜力和应用价值,成为现代生命科学领域中不可或缺的关键技术之一。
2、主要技术介绍
根据市场调研发现,自基因编辑技术诞生以来,经过不断的发展和创新,已经涌现出多种各具特色的技术方法,其中锌指核酸酶(ZFN)技术、转录激活样效应因子核酸酶(TALEN)技术、CRISPR/Cas 技术以及 RNA 编辑技术等在基因编辑领域占据了重要地位,它们各自具有独特的作用机制、优势和应用场景,推动着基因编辑技术在不同领域的广泛应用和深入发展。
1.2.1 ZFN 技术
锌指核酸酶(ZFN)技术是第一代人工核酸内切酶介导的基因编辑技术,其核心在于利用锌指蛋白来实现对特定 DNA 序列的精准识别。锌指蛋白是一种具有特殊结构的蛋白质,其结构中包含多个锌指结构域,每个锌指结构域通常由约 30 个氨基酸组成,能够特异性地识别并结合 DNA 上的 3 个连续碱基对。通过合理设计和组合不同的锌指结构域,可以构建出能够识别任意特定 DNA 序列的锌指蛋白。
将锌指蛋白与核酸酶 FokI 进行融合,形成具有切割活性的锌指核酸酶。当锌指蛋白识别并结合到目标 DNA 序列后,与之融合的 FokI 核酸酶会被招募到该位点。FokI 核酸酶需要形成二聚体才能发挥切割活性,只有当两个 ZFN 分子分别结合到目标 DNA 序列上相邻的位点时,FokI 核酸酶才能形成二聚体,进而对 DNA 双链进行切割,产生双链断裂。
ZFN 技术的显著优点是具有较高的特异性,能够相对精准地定位到目标 DNA 序列并进行编辑,这使得它在基因治疗和基因功能研究等领域具有一定的应用价值。例如,在基因治疗中,ZFN 技术可以用于纠正某些致病基因的突变,为一些遗传性疾病的治疗提供了新的途径;在基因功能研究中,科研人员可以利用 ZFN 技术敲除特定基因,观察生物体的表型变化,从而深入了解基因的功能。
然而,ZFN 技术也存在一些明显的局限性。首先,其设计和构建过程极为复杂,需要对锌指蛋白的结构和功能有深入的了解,并且需要耗费大量的时间和精力来筛选和优化能够特异性识别目标序列的锌指蛋白组合。其次,ZFN 技术的成本较高,这在一定程度上限制了其大规模的应用和推广。此外,由于 ZFN 技术可能会引发细胞的免疫反应,对细胞造成损伤,这也增加了其在实际应用中的风险和不确定性。
1.2.2 TALEN 技术
转录激活样效应因子核酸酶(TALEN)技术是第二代基因编辑技术,其原理基于植物病原体黄单胞菌分泌的转录激活样效应因子(TALE)。TALE 蛋白具有独特的结构,其中心重复区域由一系列高度保守的重复单元组成,每个重复单元通常包含 33 - 35 个氨基酸。这些重复单元的氨基酸序列存在微小差异,正是这些差异决定了 TALE 蛋白对不同 DNA 碱基的特异性识别能力。
每个 TALE 重复单元能够特异性地识别并结合 DNA 上的一个碱基,通过将不同的 TALE 重复单元进行有序排列,可以构建出能够识别任意特定 DNA 序列的 TALE 蛋白。将 TALE 蛋白与核酸酶 FokI 进行融合,形成 TALEN 分子。当 TALE 蛋白识别并结合到目标 DNA 序列后,FokI 核酸酶会被招募到该位点。同样,FokI 核酸酶需要形成二聚体才能发挥切割活性,只有当两个 TALEN 分子分别结合到目标 DNA 序列上相邻的位点时,FokI 核酸酶才能形成二聚体,进而对 DNA 双链进行切割,实现对目标基因的编辑。
TALEN 技术相较于 ZFN 技术具有一些明显的优势。首先,TALEN 的设计相对简单,其识别 DNA 序列的机制更加直接和易于理解,科研人员可以根据目标 DNA 序列较为方便地设计和构建相应的 TALEN 分子,大大缩短了研发周期。其次,TALEN 技术具有更高的特异性,能够更准确地定位到目标基因序列,减少脱靶效应的发生,这在基因治疗和基因功能研究等对准确性要求极高的领域具有重要意义。例如,在基因治疗中,TALEN 技术可以更精准地修复致病基因的突变,降低对正常基因的影响,提高治疗的安全性和有效性;在基因功能研究中,高特异性的 TALEN 技术可以更可靠地敲除或修饰特定基因,为深入探究基因功能提供更有力的工具。
然而,TALEN 技术也并非完美无缺。构建 TALEN 分子的过程仍然较为耗时,需要进行多步的克隆和组装操作,这在一定程度上限制了其应用的效率。此外,TALEN 技术的成本相对较高,这也使得其在一些对成本较为敏感的研究和应用场景中受到一定的制约。
1.2.3 CRISPR/Cas 技术
CRISPR/Cas 技术,全称为成簇的规律间隔的短回文重复序列及其相关蛋白技术,是第三代基因编辑技术,也是目前应用最为广泛和深入的基因编辑技术之一。该技术源于细菌和古细菌的免疫系统,是它们抵御外来病毒和噬菌体入侵的重要防御机制。
CRISPR 序列由一系列短的重复序列(repeat)和间隔序列(spacer)交替排列组成。当细菌受到病毒或噬菌体的入侵时,病毒的 DNA 片段会被整合到 CRISPR 序列中,成为新的间隔序列。这些间隔序列记录了病毒的遗传信息,相当于细菌的 “免疫记忆”。当相同的病毒再次入侵时,CRISPR 序列会转录生成 pre-crRNA,pre-crRNA 经过加工后形成成熟的 crRNA。crRNA 会与 Cas 蛋白结合形成核糖核蛋白复合体。在这个复合体中,crRNA 起到引导作用,它能够凭借其与目标 DNA 序列互补的部分,引导 Cas 蛋白特异性地靶向识别入侵病毒的核酸。
Cas 蛋白家族具有多种类型,其中最为人们所熟知的是 Cas9 蛋白。Cas9 蛋白含有两个核酸酶结构域:HNH 结构域和 RuvC-like 结构域。当 crRNA 引导 Cas9 蛋白识别并结合到目标 DNA 序列后,HNH 结构域会切割与 crRNA 互补的 DNA 链,RuvC-like 结构域则会切割另一条 DNA 链,从而在目标位点产生双链断裂。细胞自身的 DNA 修复机制会对双链断裂进行修复,在修复过程中,通过引入特定的供体 DNA 模板,可以实现对目标基因的精确编辑,如基因敲除、基因插入或基因替换等操作。
CRISPR/Cas 技术具有诸多显著的优势,使其在基因编辑领域迅速崛起并得到广泛应用。首先,该技术操作简便,科研人员只需设计与目标基因互补的 crRNA 序列,即可引导 Cas 蛋白对目标基因进行编辑,相较于 ZFN 和 TALEN 技术,大大降低了技术门槛和操作难度。其次,CRISPR/Cas 技术成本低廉,不需要复杂的蛋白质设计和构建过程,只需合成相应的 RNA 序列,这使得更多的科研团队和实验室能够开展相关研究。再者,CRISPR/Cas 技术具有高效性,能够在较短的时间内实现对目标基因的编辑,并且编辑效率较高,大大提高了研究和应用的效率。此外,CRISPR/Cas 技术还具有广泛的适用性,不仅可以应用于细菌、植物、动物等多种生物体系,还可以用于基因功能研究、基因治疗、作物育种、生物制药等多个领域。
在基因功能研究方面,CRISPR/Cas 技术可以快速构建基因敲除或敲入的细胞模型和动物模型,帮助科研人员深入了解基因的功能和作用机制;在基因治疗领域,CRISPR/Cas 技术为治疗多种遗传性疾病和疑难病症带来了新的希望,例如镰状细胞贫血、囊性纤维化等单基因遗传病,通过对患者体内致病基因的编辑,有望实现从根本上治愈疾病;在作物育种中,CRISPR/Cas 技术可以精准地改良农作物的性状,培育出具有抗病虫害、耐旱、高产等优良特性的新品种,为保障全球粮食安全和农业可持续发展提供了有力支持;在生物制药领域,CRISPR/Cas 技术可以用于优化药物研发过程,提高药物的质量和产量,开发出更高效、更安全的药物。
然而,CRISPR/Cas 技术也存在一些潜在的风险和挑战。其中最为突出的问题是脱靶效应,即 Cas 蛋白可能会在非目标位点进行切割,导致非预期的基因突变,这可能会对生物体的正常生理功能产生负面影响,甚至引发新的疾病。此外,CRISPR/Cas 技术在应用过程中还可能引发伦理道德争议,例如在人类生殖细胞编辑方面,可能会改变人类的遗传基因库,对人类的遗传多样性和未来发展产生深远影响,因此需要谨慎对待和严格监管。
1.2.4 RNA 编辑技术
RNA 编辑技术是一种新兴的基因编辑技术,与传统的 DNA 编辑技术不同,它主要是在 RNA 水平上对遗传信息进行修饰和调控,具有可逆性和动态调控的特点。RNA 编辑的过程主要涉及一类特殊的酶,其中腺苷酸脱氨酶(ADARs)是最为常见的一类。ADARs 能够识别 RNA 分子中的特定碱基,通常是腺嘌呤(A),并将其脱氨基转化为肌苷(I)。由于肌苷在 RNA 翻译过程中会被识别为鸟嘌呤(G),因此这种碱基的改变会导致 RNA 序列与其对应的 DNA 序列产生差异,从而实现对基因表达和蛋白质功能的调控。
RNA 编辑技术在多个领域展现出了重要的应用价值和广阔的应用前景。在神经系统研究中,RNA 编辑发挥着至关重要的作用,尤其是在脑发育和功能调控方面。通过对神经元细胞中关键 RNA 分子的编辑,可以模拟或修复与神经系统相关的疾病,深入研究神经系统疾病的发病机制,并为开发针对性的治疗方法提供理论依据。例如,某些神经系统疾病可能是由于特定 RNA 分子的异常表达或功能缺陷导致的,通过 RNA 编辑技术对这些 RNA 分子进行精准修饰,有望恢复其正常功能,从而达到治疗疾病的目的。
在疾病模型研究领域,RNA 编辑技术为构建特定的疾病模型提供了有力工具。科研人员可以通过编辑关键基因的 RNA 序列,模拟疾病相关突变的效应,在细胞或生物体水平上构建出与人类疾病相似的模型,用于深入研究疾病的发生发展机制、寻找新的治疗靶点以及评估药物的疗效和安全性。例如,对于一些复杂的多基因遗传病,传统的研究方法往往难以准确模拟疾病的病理过程,而 RNA 编辑技术可以在不改变基因组 DNA 的前提下,精准地调控相关基因的 RNA 表达和功能,从而更真实地模拟疾病状态,为疾病研究提供更有效的模型。
在药物研发方面,RNA 编辑技术也具有巨大的潜力。通过对 RNA 序列的编辑,可以调控特定基因的表达水平或功能,为开发针对特定疾病的治疗方法开辟新的途径。例如,针对某些癌症,科研人员可以利用 RNA 编辑技术靶向调控与肿瘤发生发展密切相关的基因,抑制肿瘤细胞的生长和增殖,或者增强机体的免疫反应,提高对肿瘤细胞的杀伤能力;对于一些遗传性疾病,也可以通过 RNA 编辑技术修复突变的 RNA 序列,恢复正常的基因表达和蛋白质功能,从而达到治疗疾病的目的。此外,RNA 编辑技术还可以用于优化药物的作用靶点,提高药物的特异性和疗效,降低药物的副作用。
在农业生物技术领域,RNA 编辑技术同样具有重要的应用前景。通过对作物 RNA 序列的编辑,可以改善作物的多种性状,如提高作物的产量、增强作物对病虫害的抗性、提升作物的逆境适应能力等。例如,通过编辑作物中与光合作用相关的 RNA 分子,可以提高作物的光合效率,从而增加作物的产量;编辑与作物抗病相关的 RNA 序列,可以使作物获得对特定病虫害的抗性,减少农药的使用,降低农业生产成本,同时也有利于环境保护和生态平衡。
二、基因编辑技术行业发展历程
1、早期探索
基因编辑技术的发展可以追溯到 20 世纪 70 年代,当时正值基因工程的萌芽阶段。1970 年,科学家 Smith H・O 等从流感病毒中成功提取了第一个限制性内切酶 Hind II,这一发现成为基因编辑技术发展历程中的重要里程碑。限制性内切酶能够识别双链 DNA 分子上的特异序列,这些识别区通常具有回纹结构,并且可以使两个特定核苷酸之间的磷酸二酯键断裂,从而实现对 DNA 的切割。这一特性为基因操作提供了关键工具,使得科学家们能够在分子层面上对 DNA 进行精确的切割和重组,为后续基因编辑技术的发展奠定了坚实基础。
随着对限制性内切酶研究的深入,越来越多的限制性内切酶被发现和鉴定。截至目前,已从微生物中发现了超过 200 种限制性内切酶,其中大部分能够切割 DNA 形成粘性末端,如 EcoR I,它能够识别 6 个碱基的特定序列 “5’-G AATTC-3’ ,3’-CTTAA G-5’”,并在识别位点进行切割,形成具有互补碱基的粘性末端,这种粘性末端使得不同来源的 DNA 片段能够通过碱基互补配对的方式进行连接,为基因重组提供了便利条件。
在这一时期,科学家们利用限制性内切酶进行了大量的基因操作实验,包括将外源 DNA 片段与载体连接,构建重组 DNA 分子。通过将重组 DNA 分子导入宿主细胞,实现了外源基因在宿主细胞中的表达,开启了基因工程的新纪元。例如,1973 年,Cohen 和 Boyer 等人成功地将来自不同生物的 DNA 片段连接起来,并将其导入大肠杆菌细胞中,实现了外源基因在大肠杆菌中的表达,这一实验标志着基因工程技术的正式诞生,也为基因编辑技术的发展提供了重要的实践经验和技术支持。
2、技术革新阶段
1993 年,CRISPR-Cas 天然免疫系统的发现为基因编辑技术的发展带来了新的契机。当时,科学家们在对细菌和古菌的研究中,发现了一种独特的 DNA 序列,即成簇的规律间隔的短回文重复序列(CRISPR),以及与之相关的蛋白(Cas),它们共同构成了 CRISPR-Cas 系统,这一系统被证明是细菌和古菌抵御外来病毒和噬菌体入侵的重要防御机制。然而,在发现初期,CRISPR-Cas 系统的功能和作用机制并未被完全理解,其在基因编辑领域的潜在应用也尚未被充分发掘。
进入 21 世纪,随着对 CRISPR-Cas 系统研究的不断深入,科学家们逐渐揭示了其工作原理。2005 年,两项独立的研究表明,CRISPR 间隔序列与噬菌体、病毒和质粒中发现的序列相似,并且病毒不会感染具有同源间隔序列的细菌,这一发现揭示了 CRISPR 序列在原核生物适应性免疫系统中的重要作用。2007 年,Danisco 的研究人员通过实验进一步证实,将源自噬菌体基因组序列的新间隔序列整合到易受噬菌体攻击的细菌中,能够改变细菌细胞对噬菌体的抵抗力,从而首次演示了 CRISPR 系统可以作为细菌的一种获得性免疫机制,防御外来遗传物质的侵入。这些研究成果为 CRISPR-Cas 系统在基因编辑领域的应用奠定了理论基础。与此同时,2000 年左右,RNA 干扰(RNAi)技术的出现也为基因编辑领域带来了新的突破。RNAi 是一种由双链 RNA 介导的同源 mRNA 特异性降解的过程,能够在转录后水平上对基因表达进行调控。1995 年,Guo 等在利用反义技术研究线虫的基因功能时,首次观察到了 RNAi 现象。1998 年,Fire 等将靶向 Par -1 基因的正反义链 RNA 混合物注入线虫卵中,发现双链 RNA(dsRNA)抑制靶基因表达的能力比任一单链 RNA 强 10 倍以上,并且靶 mRNA 受到明显的干扰,呈现出可传递给后代的特异表型,从而正式提出了 “dsRNA 介导的 RNA 干扰” 现象。此后,RNAi 技术在植物、动物、真菌等多种生物中得到了广泛证实和深入研究。
RNAi 技术的作用机制主要包括起始阶段和效应阶段。在起始阶段,外源导入或由转基因、转座子、病毒感染等方式引入的 dsRNA 被细胞内的 Dicer 酶切割成 21 - 23 nt 长的小分子干扰 RNA 片段(siRNA),这些 siRNA 具有 3’末端有两个碱基凸出,5’末端为磷酸的双链结构。在效应阶段,双链 siRNA 被包裹进入一个多蛋白复合体中,形成 RNA 诱导的沉默复合体(RISC)。在 ATP 存在的情况下,RISC 被激活,双链 siRNA 打开,其中的单链 siRNA 作为向导,引导 RISC 寻找与之互补的靶 mRNA,然后内切核酸酶在 siRNA 附近切割 mRNA,使其降解,从而实现对靶基因表达的抑制。
RNAi 技术的出现为基因功能研究和基因治疗等领域提供了一种强大的工具。通过设计和合成针对特定基因的 siRNA,可以特异性地沉默目标基因的表达,从而研究该基因的功能和作用机制。在基因治疗方面,RNAi 技术可以用于抑制致病基因的表达,为治疗某些遗传性疾病和病毒性疾病提供了新的策略和方法。例如,在癌症治疗中,通过 RNAi 技术沉默与肿瘤发生发展相关的基因,有望抑制肿瘤细胞的生长和增殖;在抗病毒治疗中,针对病毒基因设计的 siRNA 可以有效抑制病毒的复制和传播。
3、CRISPR-Cas9 技术的突破
2012 年,Jennifer Doudna 和 Emmanuelle Charpentier 在《Science》杂志上发表了一篇具有里程碑意义的论文,揭示了 CRISPR-Cas9 基因编辑的详细作用机制,并指出了其作为基因组编辑工具的巨大潜力。她们的研究发现,Cas9 蛋白可以利用 RNA 分子作为引导,识别并切割特定的 DNA 序列。在 CRISPR-Cas9 系统中,CRISPR 序列转录生成的 pre-crRNA 经过加工后形成成熟的 crRNA,crRNA 与反式激活 CRISPR RNA(tracrRNA)结合形成复合物,该复合物与 Cas9 蛋白结合后,能够引导 Cas9 蛋白特异性地靶向目标 DNA 序列。Cas9 蛋白含有两个核酸酶结构域:HNH 结构域和 RuvC-like 结构域,当识别到目标 DNA 序列后,HNH 结构域切割与 crRNA 互补的 DNA 链,RuvC-like 结构域切割另一条 DNA 链,从而在目标位点产生双链断裂。这一发现使得 CRISPR-Cas9 系统成为一种极具潜力的基因编辑工具,为基因编辑技术的发展带来了革命性的突破。
2013 年,张锋在《Science》杂志上发表论文,首次将 CRISPR-Cas9 基因编辑技术改进并成功应用于哺乳动物和人类细胞。这一成果使得 CRISPR-Cas9 技术真正进入了人类基因编辑领域,开启了基因编辑技术在生物医学领域广泛应用的新篇章。与传统的基因编辑技术如锌指核酸酶(ZFN)和转录激活样效应因子核酸酶(TALEN)相比,CRISPR-Cas9 技术具有操作简便、成本低廉、效率高、特异性强等显著优势。科研人员只需设计与目标基因互补的 crRNA 序列,即可引导 Cas9 蛋白对目标基因进行编辑,大大降低了基因编辑的技术门槛和操作难度。同时,CRISPR-Cas9 技术的成本相对较低,不需要复杂的蛋白质设计和构建过程,只需合成相应的 RNA 序列,这使得更多的科研团队和实验室能够开展相关研究。此外,CRISPR-Cas9 技术的编辑效率较高,能够在较短的时间内实现对目标基因的编辑,并且可以同时对多个基因进行编辑,为基因功能研究和基因治疗等领域提供了更为强大和高效的工具。
自 2013 年以来,CRISPR-Cas9 技术在全球范围内得到了广泛的研究和应用,迅速成为基因编辑领域的主流技术。在生物医学领域,CRISPR-Cas9 技术被广泛应用于基因功能研究、疾病模型构建、基因治疗等方面。通过 CRISPR-Cas9 技术构建基因敲除或敲入的细胞模型和动物模型,科研人员能够深入研究基因的功能和作用机制,为揭示疾病的发病机制和开发新的治疗方法提供了重要的基础。在基因治疗方面,CRISPR-Cas9 技术为治疗多种遗传性疾病和疑难病症带来了新的希望,如镰状细胞贫血、囊性纤维化等单基因遗传病,以及癌症、艾滋病等复杂疾病。在农业领域,CRISPR-Cas9 技术被用于改良农作物的性状,培育具有抗病虫害、耐旱、高产等优良特性的新品种,为保障全球粮食安全和农业可持续发展做出了重要贡献。在生物制药领域,CRISPR-Cas9 技术加速了创新药物的研发进程,为开发新型治疗方法和药物提供了广阔的空间。
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